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Diagnostisches Angebot des Biochemischen
Labors der Universitäts-Kinderklinik Mainz |
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Die Diagnose einer lysosomalen Speicherkrankheit
sollte in mehreren Schritten erfolgen. Dem Nachweis des
Enzym-Defektes müssen verschiedene (biochemische und morphologische)
Untersuchungen vorausgehen: Weist ein Patient grobe Gesichtszüge,
Skelett-Veränderungen, eine Hepatosplenomegalie und eine
progressive mentale Retardierung auf, sollte an eine Mukopolysaccharidose
oder Glykoproteinose gedacht werden. In diesen Fällen wird
empfohlen, den Urin zunächst auf die Ausscheidung von komplexen
Kohlenhydraten zu untersuchen. Die auf Grund des Urinbefundes
gestellte Diagnose muß anschließend enzymatisch bestätigt
werden. Bei Verdacht auf eine Lipidose sollte am Beginn
des diagnostischen Vorgehens die morphologische Untersuchung
auf Speicherzellen stehen. Charakteristische üSchaumzellenü
(M. Gaucher) oder eine üSea-Blue-Histiozytoseü (M. Niemann-Pick)
lassen eine vorläufige Diagnose zu; der Nachweis des Enzymdefektes
ist jedoch auch hier unbedingt erforderlich. Bei Leukodystrophien
(metachromatische Leukodystrophie, Globoidzell-Leukodystrophie)
muß eine Bestimmung der Nervenleit-Geschwindigkeit erfolgen.
Enzymatische Analysen sind im Serum, Leukozyten und Fibroblasten
möglich.
Folgende Analysen (einschließlich pränataler Diagnosen)
können im Biochemischen Labor der Kinderklinik Mainz durchgeführt
werden:
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| 1. |
Mukopolysaccharidosen: Mukopolysaccharidose
I (Hurler/Scheie), II (Hunter), III A, B und C (Sanfilippo
A, B und C), IV (Morquio), VI (Maroteaux-Lamy) und VII
(Sly). |
| 2. |
Gangliosidosen: GM1-Gangliosidose,
GM2-Gangliosidose (M. Tay-Sachs, M. Sandhoff) |
| 3. |
Lipid-Speicherkrankheiten: M. Gaucher,
M. Niemann-Pick, M. Fabry |
| 4. |
Metachromatische Leukodystrophie,
M. Schindler |
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- Labordiagnostik lysosomaler
Speicherkrankheiten - |
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| 1. Gruppen-Tests im Urin |
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Patienten mit einer Mukopolysaccharidose
weisen im Urin einen erhöhten Gehalt an Glykosaminoglykanen
(Dermatansulfat, Heparansulfat, Chondroitinsulfat) auf.
Auf dem Nachweis einer vermehrten Ausscheidung an komplexen
Kohlehydraten (Glykosaminoglykanen, Oligosacchariden)
beruhen die Gruppen-Tests, durch die eine große Zahl von
Störungen im Stoffwechsel komplexer Kohlehydrate erfaßt
werden kann: |
| - Berry-Test:
Dieser einfache Suchtest beruht auf der spezifischen
Färbung der Mukopolysaccharide mit Toluidin-Blau. Durch
einen zu hoch konzentrierten Urins kann dieser Test falsch-positiv
ausfallen, es können jedoch auch falsch-negative Resultate
erhalten werden (besonders bei M. Morquio). |
- Quantitative Analyse der Mukopolysaccharide:
Die quantitative Analyse der Mukopolysaccharide erfolgt
mit dem DMB-Test: Glykosaminoglykane lassen sich mit einem
bestimmten Farbstoff (Dimethyl-Methylenblau) spezifisch
anfürben. Die Farbreaktion kann photometrisch gemessen
werden und erlaubt eine exakte Bestimmung der Mukopolysaccharide
im Urin, wobei die Glykosaminoglykan-Konzentration auf
den Kreatinin-Wert bezogen wird. |
| - Dünnschicht-Chromatographie
der Oligosaccharide
Höhermolekulare Oligosaccharide lassen sich mittels Dünnschicht-Chromatographie
qualitativ nachweisen. Mit Hilfe dieser Methode können
insbesondere Patienten mit einer GM1-Gangliosidose, Sialidose,
Mannosidose, Fukosidose und Aspartylglukosaminurie erfaßt
werden. |
- Nachweis freier Neuraminsüure
Auch freie Neuraminsäure kann in einem Dünnschicht-chromatographischen
Verfahren im Urin nachgewiesen werden. Diese Methode erlaubt
die Diagnose einer Salla-Disease oder ühnlicher Krankheitsbilder,
die mit erhöhter Neuraminsäure-Ausscheidung (Sialurie)
einhergehen.
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| 2. Qualitative Analyse der
Mukopolysaccharide im Urin |
|
Das Verteilungsmuster der im Urin ausgeschiedenen
Glykosaminoglykane weist bei den verschiedenen Mukopolysaccharidosen
spezifische Unterschiede auf: So scheiden Patienten mit
einem M. Hurler oder einem M. Hunter vorwiegend Dermatan-
und Heparansulfat aus, während eine vermehrte Keratansulfat-Ausscheidung
auf einen M. Morquio hinweist. Der Differenzierung der
verschiedenen Mukopolysaccharide dient die Elektrophorese:
Die aus dem Urin isolierten Glykosaminoglykane werden
auf einer Zelluloseazetat-Folie elektrophoretisch aufgetrennt.
Mit Hilfe dieses Verfahrens können Dermatan-, Heparan-,
Chondroitin- und Keratan-Sulfat identifiziert werden.
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| 3. Enzym-Bestimmung |
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Die Urin-Untersuchung erlaubt nur eine
vorläufige diagnostische Zuordnung zu einer bestimmten
Mukopolysaccharidose oder Glykoproteinose. Zur definitiveN
Diagnose ist der Nachweis des zugrundeliegenden Enzymdefektes
erforderlich. Nur dadurch ist auch eine pränatale Erfassung
einer bestimmten Stoffwechsel-störung möglich.
Lysosomale Enzyme können in kultivierten Fibroblasten
gemessen werden. Teilweise ist jedoch auch eine enzymatische
Bestimmung im Serum oder in einer Leukozytenpräparation
möglich. Die Enzym-Messungen erfolgen mit Hilfe künstlicher
Substrate: Bei diesen Substanzen ist die für die katalytische
Aktivität erforderliche spezifische Bindungsstelle an
die fluoreszierende Substanz Methylumbelliferon gebunden.
Unter der Enzym-Einwirkung wird Methylumbelliferon freigesetzt
und kann dann in einem Fluoreszenz-Photometer gemessen
werden.
Bei allen lysosomalen Speicherkrankheiten ist eine pränatale
Diagnose in kultivierten Amnionzellen möglich. Einige
lysosomale Enzyme lassen sich auch in Chorionzellen messen;
das Ergebnis der biochemischen Analyse kann dann bereits
im 1. Trimenon vorliegen. |
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| Diagnostisches Vorgehen bei Verdacht auf
eine lysosomale Speicherkrankheit |
| 1. Allgemeine Vorbemerkung |
|
Eine Reihe von Symptomen kann an
eine lysosomale Speicherkrankheit denken lassen. Vergröberte
Gesichtszüge bereits im Säuglingsalter sind Hinweis für
eine Mukolipidose II oder eine GM1-Gangliosidose. Auch
ein früh auftretender Gibbus ist ein wichtiger Hinweis
auf eine Störung im Stoffwechsel komplexer Kohlehydrate
(Mukopolysaccharidose, Mukolipidose, Glykoproteinose).
Es ist empfehlenswert, zunüchst den Urin auf Mukopolysaccharide,
Oligosaccharide und freie Neuraminsäure zu untersuchen.
Dabei sind jedoch folgende Punkte zu beachten: |
| a) |
Bei älteren Patienten (besonders mit M. Morquio)
kann die Mukopolysaccharid-Ausscheidung normal sein! |
| b) |
Da die Mukopolysaccharid-Ausscheidung im Laufe
des Tages starken Schwankungen unterliegt, sollte
nur ein Urin analysiert werden, der über einen Zeitraum
von 24 Stunden gesammelt wurde. |
| c) |
Bei einer Mukolipidose II (I-Cell Disease)
oder einer Mukolipidose III (Pseudo-Hurler-Polydystrophie)
läßt sich weder eine vermehrte Ausscheidung von
Oligosacchariden noch von Mukopolysacchariden nachweisen.
Es ist deshalb wichtig, neben der Urin-Untersuchung
die Aktivität von mindestens zwei lysosomalen Enzymen
(z.B. Hexosaminidase A & B, ß-Glukuronidase) im
Serum zu messen. |
|
| Der Nachweis eines Enzym-Defektes
kann nicht unbedingt auch eine Aussage über die exakte
biochemische und klinische Diagnose machen: Wurde bei
einem Patienten mit Hurler-ähnlichem Gesicht und ausgeprägter
neurologischer Symptomatik lediglich eine erniedrigte
Aktivität der N-Azetylgalaktosamin-6-Sulfatase gemessen,
so muß zunächst die biochemische Diagnose lauten: Mukopolysaccharidose
Typ IV (M. Morquio). Bei Kenntnis der klinischen Daten
des Patienten wird der Untersucher jedoch noch weitere
Sulfatasen messen, so daß dann die Diagnose eines multiplen
Sulfatase-Defektes gestellt werden kann.
Eine erniedrigte Aktivität der Arylsulfatase A kann in
seltenen Füllen auch in der Normal-Population gefunden
werden. Dieser Befund wird als Pseudo-Arylsulfatase-Defizienz
bezeichnet.
Aus diesen Beispielen wird ersichtlich, daß die
Diagnose einer lysosomalen Speicherkrankheit eine enge
Kooperation von betreuendem Arzt, biochemischem Labor
und eventuell auch Pathologen erfordert. Nur dadurch sind
eine exakte Einordnung des Krankheitsbildes und meist
auch eine prognostische Aussage möglich. Auch setzt eine
pränatale Diagnose selbstverständlich voraus, daß bei
dem Index-Fall der Nachweis des zugrundeliegenden Enzym-Defektes
geführt wurde. |
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| 1) GROUP SCREENING TESTS |
| GROUP |
METHOD |
SPECIMEN |
| Oligosaccharides |
TLC |
24 hrs urine |
| |
(deep frozen or fresh) |
| 2) SPECIFIC METABOLITE ASSAYS |
| METABOLITE |
DISORDER |
METHOD |
SPECIMEN |
| Mucopoly |
Mucopoly |
DMB-Test |
24 hrs urine |
| saccharides |
saccharidoses |
Fractionation by electrophoresis |
(deep frozen or fresh) |
| Neuraminic acid |
Salla-Disease |
TLC |
24 hrs urine |
| |
|
|
(deep frozen or fresh) |
| 3) ENZYME ASSAYS |
| NAME OF ENZYME |
USUAL NAME |
METHOD |
SPECIMEN |
Iduronidase
(EC 3.2.1.76) |
M. Hurler/Scheie
(MPS I)
AFC,CVS |
4-MU release from
4-MU-iduronide |
L,F |
Iduronate-S
sulfatase
(EC 3.1.6.13) |
M. Hunter
(MPS II)
AF,CVS |
35S-release from
35S-Disaccharide |
S,F |
Sulfamidase
(EC 3.10.1.1 |
M. Sanfilippo A
(MPS III A)
AFC,CVS |
35S-release from
35S-Heparin |
L,F |
a-N-acetylglucosaminidase
(EC 3.2.1.50) |
M. Sanfilippo B
(MPS IIIB)
AFC,CVS |
4-MU release from
4-MU-glucosaminide |
S,F |
| Acetyl-CoA:a-Glucosaminide N-Acetyltransferase
|
M. Sanfilippo C
(MPS IIIC) |
14C-NAc-glucosamine formation from 14C-glucosamine |
F,AFC |
| N-acetylglucosamine 6-sulfate sulfatase |
M. Sanfilippo D
(MPS III D) |
NAc-glucosamine release from NAC glucosamine-sulfate |
F,AFC |
N-acetylgalactosamine-6-sulfate sulfatase
(EC 3.1.6.4) |
M. Morquio A
(MPS IV A) |
Release of mono sulphated form of 3H-trisaccharide |
L,F,AFC |
Arylsulphatase B
(EC 3.1.6.1) |
M.Lamy-Maroteaux
F,AFC
(MPS VI) |
Release of nitrophenyl from nitrocatecholsulfate |
|
ß-Glucuronidase
(EC 3.2.1.31) |
M. Sly
S,L,F
(MPS VII)
AFC |
4-MU release from 4-MU-glucuronide |
|
ß-Galactosidase
(EC 3.2.1.23) |
GM1-gangliosidosis
L,F,AFC
M. Morquio B |
4-MU release from 4-MU-ß-galactopyranoside |
|
ß-N-acetyl-D-hexosaminidase A and B
(EC 3.2.1.52)
S,L,F |
GM2-gangliosidosis
(M. Sandhoff, Tay-Sachs)
AFC,CVS |
4-MU release from 4-MU-glucopyranoside |
|
a-Mannosidase
(EC 3.2.1.24) |
a-Mannosidosis
S,L,F
AFC,CVS |
4-MU release from 4-MU-a-mannoside |
|
ß-Mannosidase
(EC 3.2.1.25) |
ß-Mannosidosis
S,L,F
AFC |
4-MU release from 4-MU-ß-mannoside |
|
a -Fucosidase
(EC 3.2.2.51) |
a-Fucosidosis
S,L,F
AFC,CVS |
4-MU release from 4-MU-fucoside |
|
Aspartylglucosaminidase
F,AFC
(EC 3.5.1.26)
CVS |
Aspartylglucos-aminuria |
Release of NAc glucosamine from aspartoglucopyranoside |
|
a -Galactosidase A
L,F
(EC 3.2.1.22) |
M. Fabry |
4-MU release from 4-MU-a-galactopyranoside AFC |
|
a-N-Acetylgalactosaminidase ( = a-Galactosidase
B)
(EC 3.2.1.49)
F,AFC |
Schindler`s Disease |
4-MU release from 4-MU-a-galactopyranoside |
|
a-Neuraminidase
F,AFC
(EC 3.2.1.18) |
Sialidosis
(Mucolipidosis I) |
4-MU release from 4-MU-neuraminic acid |
|
a-Glucosidase I
F,AFC
(EC 3.2.1.20) |
Glykogenosis
(M. Pompe) |
4-MU release from 4-MU a-glucoside |
|
Glucocerebroside:ß-glucosidase
(EC 3.2.1.45) |
F,AFC
M. Gaucher |
4-MU release from 4-MU ß-glucoside |
|
Sphingomyelinase
(EC 3.1.4.12) |
M. Niemann-Pick
F,AFC |
4-MU release from bis(4-MU)-phosphate |
|
Arylsulphatase A
(EC 3.1.6.1)
AFC |
Metachromatic
Leukodystrophy |
Release of nitrophenyl from nitrocatecholsulfate |
L,F |
Abbreviations:
S = Serum,
L = Leukocytes,
F = Fibroblasts,
AFC = Amniotic fluid cells,
CVS = Chorion villi sample
4-MU = 4-Methylumbelliferyl |
|
| MUKOPOLYSACCHARIDOSEN
|
|
TYP |
ENZYM-DEFEKT |
URIN-AUSSCHEIDUNG |
|
|
M. Hurler |
|
|
|
MPS I |
M. Hurler/Scheie |
a-Iduronidase
(L,F) |
DS/HS |
|
|
M. Scheie |
|
|
|
MPS II |
M. Hunter |
Iduronat-S-Sulfatase
(S,F) |
DS/HS |
|
MPS III A |
M. Sanfilippo A |
Heparan-N-Sulfamidase (L,F) |
HS/CS |
|
MPS III B |
M. Sanfilippo B |
N-Azetyl-a -Glukosaminidase (S,F) |
HS/CS |
|
MPS III C |
M. Sanfilippo C |
N-Azetyl-Transferase (F) |
HS/CS |
|
MPS III D |
M. Sanfilippo D |
N-Azetylglucosamin-6-Sulfatase (F) |
HS/CS |
|
MPS IV A |
M. Morquio A |
N-Azetylgalaktosamin-6-Sulfatase
(L,F) |
KS/CS |
|
MPS IV B |
M. Morquio B |
ß-Galaktosidase (L,F) |
KS/CS |
|
MPS VI |
M. Lamy-Maroteaux |
Arylsulphatase B (L,F) |
DS/HS |
|
MPS VII |
M. Sly |
ß-Glucuronidase (S,F) |
CS/DS |
MUKOLIPIDOSEN
| ML II |
(I-Cell Disease) |
Phosphotransferase (S,F) |
neg. |
| ML III |
(Pseudo-Hurler-Polydystr.) |
Phosphotransferase
(S,F) |
neg. |
GLYKOPROTEINOSEN
|
|
TYP |
ENZYM-DEFEKT |
URIN-AUSSCHEIDUNG |
|
a-Mannosidose |
|
Mannosidose (S,L,F) |
Oligos. |
|
ß-Mannosidose |
|
ß-Mannosidase (S,L,F) |
Oligos. |
|
a-Fucosidose |
|
a-Fucosidase (S,L,F) |
Oligos. |
|
Sialidose |
(Typ I und II)) |
a-Neuraminidase (F) |
Oligos. |
|
Aspartyl-Glukosaminurie |
|
N-Aspartyl-Glukosaminidase |
Oligos. |
FREIE NEURAMINSÄURE-SPEICHERKRANKHEIT
| Salla-Disease |
freie Neuraminsäure in den
|
freie |
| u.a. Formen |
Fibroblasten
erhöht (F) |
Neuramins. |
GANGLIOSIDOSEN
| GM1-Gangliosidose |
ß-Galaktosidase
(L,F) |
Oligos. |
|
| Galaktosialidose |
ß-Galaktosidase und |
Oligos. |
|
|
|
|
a-Neuraminidase (F) |
|
|
|
|
|
Oligos. |
| GM2-Gangliosidose |
M. Sandhoff |
Hexosaminidase A und B (S,L,F) |
|
|
|
Hexosaminidase A (S,L,F) |
neg. |
|
LIPIDOSEN
| TYP |
ENZYM-DEFEKT |
URIN-AUSSCHEIDUNG |
|
|
Chronisch
(Typ I) |
|
|
| M. Gaucher |
Neuropathisch
(Typ II) |
ß-Glucosidase
(F) |
neg. |
|
|
Subakut (Typ
III) |
|
|
| M. Krabbe
(Globoidzell-Leukodystr.) |
Cerebrosid-ß-Galaktosidase
(L,F) |
neg. |
|
| Metachromatische |
|
|
|
| Leukodystrophie |
Arylsulphatase
A (L,F) |
Sulfatide |
|
| Multipler |
|
Mehrere lysosomale |
DS/HS/KS |
| Sulfatase-Defekt |
Sulfatasen
(F) |
|
|
| M. Niemann-Pick |
Typ A & B |
Sphingomyelinase (F) |
neg. |
| M. Fabry |
|
a-Galaktosidase (L, F)) |
Ceramide |
Abkürzungen: F = Fibroblasten, L = Leukozyten, S = Serum
|
MUKOPOLYSACCHARIDOSEN
|
|
TYP |
ENZYM-DEFEKT |
URIN-AUSSCHEIDUNG |
| MPS
I |
M.
Hurler; M. Hurler/Scheie; M. Scheie |
alpha-Iduronidase
(L,F) |
DS/HS
|
| MPS
II |
M.
Hunter |
Iduronat-S-Sulfatase
(S,F) |
DS/HS
|
| MPS
III A |
M.
Sanfilippo A |
Heparan-N-Sulfamidase
(L,F) |
HS/CS
|
| MPS
III B |
M.
Sanfilippo B |
N-Azetyl-alpha-Glukosamini-dase
(S,F) |
HS/CS
|
| MPS
III C |
M.
Sanfilippo C |
N-Azetyl-Transferase
(F) |
HS/CS |
| MPS
III D |
M.
Sanfilippo D |
N-Azetylglucosamin-6-Sulfatase
(F) |
HS/CS |
| MPS
IV A |
M.
Morquio A |
N-Azetylgalaktosamin-6-Sulfatase
(L,F) |
KS/CS |
| MPS
IV B |
M.
Morquio B |
ß-Galaktosidase
(L,F) |
KS/CS |
| MPS
VI |
M.
Lamy-Maroteaux |
Arylsulphatase
B (L,F) |
DS/HS |
| MPS
VII |
M.
Sly |
ß-Glucuronidase
(S,F) |
CS |
MUKOLIPIDOSEN
|
|
TYP |
ENZYM-DEFEKT |
URIN-AUSSCHEIDUNG |
| ML
II |
I-Cell
Disease |
Phosphotransferase
(S,F) |
neg. |
| ML
III |
Pseudo-Hurler-Polydystrophie |
Phosphotransferase
(S,F) |
neg. |
GLYKOPROTEINOSEN
| TYP |
ENZYM-DEFEKT |
URIN-AUSSCHEIDUNG |
| alpha-Mannosidose |
Mannosidose
(S,L,F) |
Oligos. |
| beta-Mannosidose |
beta-Mannosidase
(S,L,F) |
Oligos. |
| alpha-Fucosidose |
alpha-Fucosidase
(S,L,F) |
Oligos. |
| Sialidose
(Typ I und II) |
alpha-Neuraminidase
(F) |
Oligos. |
| Aspartyl-Glukosaminurie |
N-Aspartyl-Glukosaminidase |
Oligos. |
FREIE NEURAMINSÄURE-SPEICHERKRANKHEIT
| TYP |
ENZYM-DEFEKT |
URIN-AUSCHEIDUNG |
| Salla-Disease
u.a. Formen |
freie
Neuraminsäure in den Fibroblasten erhöht |
freie
Neuraminsäure |
GANGLIOSIDOSEN
|
|
TYP |
ENZYM-DEFEKT |
URIN-AUSSCHEIDUNG |
| GM1-Gangliosidose |
infantil,
juvenil, adult |
beta-Galaktosidase
(L,F) |
Oligos. |
| Galakto-Sialidose |
|
beta-Galaktosidase
und alpha-Neuraminidase (F) |
Oligos. |
| GM2-Gangliosidose |
M.
Sandhoff |
Hexosaminidase
A und B (S,L,F) |
Oligos. |
| GM2-Gangliosidose |
M.
Tay-Sachs |
Hexosaminidase
A (S,L,F) |
neg. |
LIPIDOSEN
|
|
TYP |
ENZYM-DEFEKT |
URIN-AUSSCHEIDUNG |
| M.
Gaucher |
Chronisch
(Typ I) |
beta-Glucosidase
(F) |
neg. |
| M.
Gaucher |
Neuropathisch
(Typ II) |
beta-Glucosidase
(F) |
neg. |
| M.
Gaucher |
Subakut
(Typ III) |
beta-Glucosidase
(F) |
neg. |
| M.
Krabbe |
Globoidzell-Leukodystrophie |
Cerebrosid-beta-Galaktosidase
(L,F) |
neg. |
| Metachromatische
Leukodystrophie |
|
Arylsulphatase
A (L,F) |
Sulfatide |
| Multipler
Sulfatase-Defekt |
|
Mehrere
lysosomale Sulfatasen (F) |
DS/HS/KS |
| M.
Niemann-Pick |
Typ
A |
Sphingomyelinase
(F) |
neg. |
| M.
Niemann-Pick |
Typ
B |
Sphingomyelinase
(F) |
neg. |
| M.
Niemann-Pick |
Typ
C |
Cholesterin-Stoffwechsel
? (F) |
neg. |
| M.
Fabry |
|
alpha-Galaktosidase
(L, F) |
Ceramide |
Abkürzungen:
F = Fibroblasten, L = Leukozyten, S = Serum
|
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|
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